Luciferáz - Luciferase

Bakteriális Luciferáz monooxigenáz család
Azonosítók
Szimbólum Bac_luciferáz
Pfam PF00296
InterPro IPR016048
PROSITE PDOC00397
SCOP2 1nfp / SCOPe / SUPFAM
Dinoflagellate Luciferáz katalitikus domén
EKT 1vpr EBI.jpg
a Lingulodinium polyedrum dinoflagellate luciferáz domén kristályszerkezete
Azonosítók
Szimbólum Luciferase_cat
Pfam PF10285
InterPro IPR018804
Dinoflagellate Luciferáz/LBP N-terminális domén
Azonosítók
Szimbólum Luciferáz_N
Pfam PF05295
InterPro IPR007959
Dinoflagellate Luciferáz spirális köteg tartomány
Azonosítók
Szimbólum Luciferáz_3H
Pfam PF10284
InterPro IPR018475

A luciferáz egy általános kifejezés a biolumineszcenciát előállító oxidatív enzimek osztályára , és általában megkülönböztetik a fotoproteintől . A nevet először Raphaël Dubois használta, aki feltalálta a luciferin és a luciferáz szavakat az és az enzimre . Mindkét szó a latin lucifer szóból származik , jelentése "fényhordozó", ami viszont a "fény" ( lux) és a "hozni vagy hordozni" ( ferre) latin szavakból származik .

Firefly luciferáz
Firefly Luciferáz kristályszerkezet.rsh.png
A Photinus pyralis szentjánosbogár luciferáz szerkezete.
Azonosítók
Szervezet Photinus pyralis
Szimbólum Firefly luciferáz
EKT 1LCI További struktúrák
UniProt P08659
Egyéb adatok
EK -szám 1.13.12.7

A luciferázokat széles körben használják a biotechnológiában , mikroszkópiában és riportergénekként , sok olyan alkalmazásban, mint a fluoreszkáló fehérjék . A fluoreszcens fehérjékkel ellentétben azonban a luciferázok nem igényelnek külső fényforrást , de szükségük van luciferin , a fogyasztható szubsztrát hozzáadására .

Példák

Különféle élőlények szabályozzák fénytermelésüket különböző luciferázok felhasználásával, különböző fénykibocsátó reakciók során. A vizsgált luciferázok többségét állatokban találták, beleértve a szentjánosbogarakat , és sok tengeri állatot, például a lábaslábúakat , a medúzákat és a tengeri árvácskákat . A luciferázokat azonban fényes gombákban, például a Jack-O-Lantern gombában , valamint más királyságokban, például fénylő baktériumokban és dinoflagellátumokban is tanulmányozták .

Firefly és kattintson bogár

A szentjánosbogarak luciferázai - amelyeknek több mint 2000 faja van - és a többi Elateroidea (kattintóbogár és általában rokonai) luciferázai elég sokfélék ahhoz, hogy hasznosak legyenek a molekuláris filogenézisben . A szentjánosbogaraknál a szükséges oxigént a hasban lévő csövön keresztül, a hasi légcsőbe juttatják . Az egyik jól tanulmányozott luciferáz a Photinini szentjánosbogár Photinus pyralis , amelynek optimális pH-ja 7,8.

Tengeri árvácska

Szintén jól tanulmányozott a tengeri árvácska , a Renilla reniformis . Ebben a szervezetben a luciferáz ( Renilla-luciferin 2-monooxigenáz ) szoros kapcsolatban áll egy luciferin-kötő fehérjével, valamint egy zöld fluoreszkáló fehérjével ( GFP ). A kalcium kiváltja a luciferin ( koelenterazin ) felszabadulását a luciferin -kötő fehérjéből. A szubsztrát ezután rendelkezésre áll a luciferáz általi oxidációhoz , ahol kolenteramiddá bomlik le, és ennek következtében energia szabadul fel. GFP hiányában ez az energia kék fény fotonjaként szabadul fel (csúcs emissziós hullámhossz 482 nm). Azonban, mivel a szorosan kapcsolódó GFP, a felszabaduló energia a luciferázt az helyett keresztül csatlakozik rezonancia energia transzfer a fluorofor a GFP, és ezt követően megjelent egy foton a zöld fény (csúcs-emissziós hullámhossz 510 nm). A katalizált reakció a következő:

Copepod

Újabb luciferázokat azonosítottak a közelmúltban, amelyek más luciferázokkal ellentétben természetesen kiválasztott molekulák. Ilyen például a Metridia coelenterazine -függő luciferáz (MetLuc, A0A1L6CBM1 ), amely a tengeri coppodból, a Metridia longa -ból származik . A Metridia longa szekretált luciferáz gén 24 kDa fehérjét kódol, amely 17 aminosavból álló N-terminális szekréciós szignálpeptidet tartalmaz. Ennek a luciferáz molekulának az érzékenysége és a magas jelintenzitása számos újságírói vizsgálatban előnyösnek bizonyul. A MetLuc-hoz hasonló szekretált riportermolekula használatának néhány előnye a lízismentes protokoll, amely lehetővé teszi, hogy élő sejtvizsgálatokat és több vizsgálatot végezzen ugyanazon a sejten.

Bakteriális

A bakteriális biolumineszcencia látható a Photobacterium fajokban, a Vibrio fischeri , a Vibrio haweyi és a Vibrio harveyi fajokban . Fényemisszió néhány biolumineszcens baktériumokban hasznosítja „antennát”, mint például a lumazin fehérjét, hogy elfogadja az energiát a primer gerjesztett állapot a luciferáz, így egy gerjesztett lulnazine kromofort , amely fényt bocsát ki, amely a rövidebb hullámhosszúságú (több kék), míg mások használjon sárga fluoreszkáló fehérjét (YFP), kromofórként FMN-t, és vörös fényt bocsát ki a luciferázhoz képest.

Dinoflagellate

Páncélos ostorosok luciferáz egy multi- domént eukarióta fehérje, amely egy N-terminális domént, és a három katalitikus domének , amelyek mindegyike megelőz egy helikális köteg domént. A szerkezet a páncélos ostorosok luciferáz katalitikus domént lett megoldva. A domén központi része egy 10 szálú béta hordó , amely szerkezetileg hasonló a lipokalinokhoz és az FABP -hez . Az N-terminális domén konzerválódott a dinoflagellate luciferáz és a luciferin- kötő fehérjék (LBP-k) között. Felmerült, hogy ez a régió közvetítheti az LBP és a luciferáz közötti kölcsönhatást, vagy azoknak a vakuoláris membránhoz való kapcsolódását . A spirális köteg domén három hélix kötegszerkezettel rendelkezik , amely négy fontos hisztidint tartalmaz , amelyekről úgy gondolják, hogy szerepet játszanak az enzim pH -szabályozásában . A dinoflagellate luciferáz β-hordójában egy nagy zseb található 8 pH-n, hogy elférjen a tetrapirrol szubsztrát, de nincs olyan nyílás, amely lehetővé teszi a szubsztrát bejutását. Ezért jelentős konformációs változásnak kell bekövetkeznie, hogy hozzáférést és teret biztosítson a ligandumnak az aktív helyen, és ennek a változásnak a forrása a négy N-terminális hisztidin-maradék. 8 pH -n látható, hogy a nem protonált hisztidin -maradékok hidrogénkötések hálózatában vesznek részt a kötegben lévő hélixek határfelületén, amelyek blokkolják a szubsztrát hozzáférését az aktív helyhez, és ezt a kölcsönhatást protonálással megzavarják (pH 6,3). vagy a hisztidin -maradékok alaninnal történő helyettesítése a köteg nagy molekuláris mozgását okozza, amely 11Å -el választja el a hélixeket és megnyitja a katalitikus helyet. Logikailag a hisztidin -maradékokat nem lehet alaninnal helyettesíteni a természetben, de ez a kísérleti helyettesítés tovább erősíti, hogy a nagyobb hisztidin -maradékok blokkolják az aktív helyet. Ezenkívül három Gly-Gly szekvencia, az egyik az N-terminális hélixben és kettő a hélix-hurok-hélix motívumban, csuklópántként szolgálhat, amely körül a láncok forognak, hogy tovább nyissák a katalitikus helyhez vezető utat és növeljék az aktív webhely.

A dinoflagellate luciferáz képes fényt kibocsátani, mivel kölcsönhatásba lép a szubsztrátumával ( luciferin ) és a luciferin-kötő fehérjével (LBP) a dinoflagellates-ben található scintillon organellában . A luciferáz a luciferin és az LBP szerint működik, hogy fényt bocsásson ki, de mindegyik komponens más pH -n működik. A luciferáz és doménjei nem aktívak 8 -as pH -n, de rendkívül aktívak az optimális 6,3 -as pH -n, míg az LBP 8 -as pH -n megköti a luciferint, és 6,3 -on szabadítja fel. Következésképpen a luciferin csak akkor szabadul fel, hogy reagáljon egy aktív luciferázzal, ha a szcintillont 6,3 pH -ra savanyítják. Ezért, annak érdekében, hogy csökkentse a pH, feszültségfüggő csatornákon a scintillon membrán nyílnak, hogy lehetővé tegye a belépését protonok egy vakuólumba rendelkező egy akciós potenciál előállított mechanikai stimuláció. Ezért látható, hogy a vakuoláris membránban fellépő akciópotenciál savasodáshoz vezet, és ez lehetővé teszi a luciferin felszabadulását, hogy reagáljon a luciferázzal a szcintillonban, és kék fényt villan fel.

A reakció mechanizmusa

Valamennyi luciferáz oxidoreduktáz ( EC 1.13.12.- ), azaz egyetlen donorra hat , molekuláris oxigénnel. Mivel a luciferázok sokféle , egymástól független fehérjecsaládból származnak, nincs egységesítő mechanizmus, mivel bármely mechanizmus a luciferáz és a luciferin kombinációjától függ. Mindazonáltal az összes jellemzett luciferáz-luciferin reakcióról kimutatták, hogy bizonyos szakaszokban molekuláris oxigénre van szükség .

Bakteriális luciferáz

A bakteriális luciferáz által katalizált reakció szintén oxidatív folyamat:

  • FMNH 2 + O 2 + RCHO → FMN + RCOOH + H 2 O + fény

A reakció során a molekuláris oxigén oxidálja a flavin-mononukleotidot és egy hosszú láncú alifás aldehidet alifás karbonsavvá . A reakció gerjesztett hidroxiflavin köztiterméket képez, amelyet az FMN termékké dehidratálva kék-zöld fényt bocsát ki.

A reakcióba bevitt energia majdnem minden energiája fénysé alakul. A reakció hatékonysága 80-90%. Összehasonlításképpen, az izzólámpa csak energiájának körülbelül 10% -át alakítja át fényké, a 150 lumen/Watt (lm/W) LED pedig a bemenő energia 20% -át látható fénysé.

Alkalmazások

A luciferázok számos célból előállíthatók a laboratóriumban géntechnológiával . A luciferáz gének szintetizálhatók és beilleszthetők a szervezetekbe, vagy transzfektálhatók a sejtekbe. 2002 -től az egerek , a selyemhernyók és a burgonya csak néhány azon organizmusok közül, amelyeket már kifejlesztettek a fehérje előállítására.

A luciferáz reakció során fény sugárzik, amikor a luciferáz a megfelelő luciferin szubsztrátra hat . A fotonkibocsátást fényérzékeny készülékekkel, például luminométerrel vagy módosított optikai mikroszkópokkal lehet kimutatni . Ez lehetővé teszi a biológiai folyamatok megfigyelését. Mivel a luciferáz biolumineszcenciához nincs szükség fénygerjesztésre, minimális az autofluoreszcencia, és ezáltal gyakorlatilag háttérmentes fluoreszcencia. Ezért akár 0,02 pg is pontosan mérhető egy szokásos szcintillációs számlálóval .

A biológiai kutatások során a luciferázt általában riporterként használják fel azoknak a sejteknek a transzkripciós aktivitásának felmérésére , amelyeket luciferáz gént tartalmazó genetikai konstrukcióval transzfektálnak, egy érdeklődő promoter irányítása alatt . Ezenkívül prolumineszcens molekulák, amelyek egy adott enzim aktivitása után luciferinné alakulnak, felhasználhatók az enzimaktivitás kimutatására kapcsolt vagy kétlépéses luciferáz vizsgálatokban. Ilyen szubsztrátokat használtak többek között a kaszpázaktivitás és a citokróm P450 aktivitás kimutatására .

A luciferáz a sejt ATP szintjének kimutatására is használható a sejtek életképességének vizsgálatában vagy a kináz aktivitás vizsgálatában. A luciferáz biotinilezés révén ATP -érzékelő fehérjeként működhet . Biotinilezése fog immobilizáljuk luciferáz a sejt-felületen történő kötődés révén egy sztreptavidin - biotin komplex. Ez lehetővé teszi a luciferáz számára, hogy érzékelje az ATP kiáramlását a sejtből, és hatékonyan megjeleníti az ATP valós idejű felszabadulását biolumineszcencián keresztül. A luciferáz ezenkívül tenni érzékenyebb az ATP kimutatási növelésével lumineszcenciaintenzitás megváltoztatásával bizonyos aminosav- maradékok a fehérje szekvenciáját.

Egész állat képalkotó (a továbbiakban in vivo , amikor élő vagy, más néven ex vivo képalkotás) egy erős technika tanulmányozására sejtpopulációk az élő állatok, mint például egerek. Különböző típusú sejtek (pl. Csontvelő őssejtek, T-sejtek) tervezhetők luciferáz expressziójához, amely lehetővé teszi azok nem invazív megjelenítését élő állatokon belül egy érzékeny töltéspárosító kamerával ( CCD kamera ). Ezt a technikát alkalmazták állatmodellekben követni a tumor kialakulását és a daganatok kezelésre adott válaszát. A környezeti tényezők és a terápiás interferenciák azonban bizonyos eltéréseket okozhatnak a daganatterhelés és a biolumineszcencia intenzitása között a proliferációs aktivitás változásaihoz képest. Az in vivo képalkotással mért jel intenzitása számos tényezőtől függhet, mint például a D-luciferin felszívódása a hashártyán, a véráramlás, a sejtmembrán permeabilitása, a társfaktorok elérhetősége, az intracelluláris pH és a fedő szövet átlátszósága. a luciferáz mennyisége.

A luciferáz egy hőérzékeny fehérje, amelyet a fehérjék denaturálásával kapcsolatos vizsgálatokban használnak, a hősokk fehérjék védő képességének tesztelésére . A luciferáz alkalmazásának lehetőségei tovább bővülnek.

Lásd még

Hivatkozások

Külső linkek

Ez a cikk magában foglalja a szöveget a nyilvánosság Pfam és InterPro : IPR018804
Ez a cikk magában foglalja a szöveget a nyilvánosság Pfam és InterPro : IPR007959
Ez a cikk magában foglalja a szöveget a nyilvánosság Pfam és InterPro : IPR018475